產(chǎn)品中心

PRODUCTS CENTER

技術(shù)文章您現(xiàn)在的位置：首頁(yè) > 技術(shù)文章 > 論文研究（二）| 緩沖體系可能對(duì)LNP的性質(zhì)與穩(wěn)定性有較大影響

論文研究（二）| 緩沖體系可能對(duì)LNP的性質(zhì)與穩(wěn)定性有較大影響

更新時(shí)間：2023-08-29 點(diǎn)擊次數(shù)：1728次

我們接著這個(gè)話題，通過(guò)一篇美國(guó)俄勒岡州立大學(xué)藥學(xué)院的研究論文，進(jìn)一步討論緩沖體系對(duì)mRNA-LNP的影響，供大家參考。

該研究測(cè)試了三種常見(jiàn)生物緩沖液——HEPES、Tris和PBS——在單次凍融前后與DLin-MC3-DMA mRNA-LNP制劑的相容性。通過(guò)電子顯微鏡、差示掃描量熱法和膜流動(dòng)性分析發(fā)現(xiàn)，不同緩沖液使LNP形態(tài)發(fā)生了不同的結(jié)構(gòu)變化。采用體外和體內(nèi)模型測(cè)量mRNA轉(zhuǎn)染效率，發(fā)現(xiàn)Tris或HEPES緩沖液中的LNPs具有更好的冷凍保護(hù)效果以及與PBS相比更高的轉(zhuǎn)染效率。

該研究中LNP配方及表征方法
將螢火蟲(chóng)熒光素酶(FLuc) mRNA用50 mM檸檬酸鈉緩沖液(pH 4)和分子級(jí)水稀釋?zhuān)_(dá)到所需體積。將DLin-MC3-DMA、DSPC、膽固醇和DMG-PEG-2000溶解在總脂質(zhì)濃度為5.5 mM的純乙醇(摩爾比為50:10:38:1.5)中，以3:1的體積比(水/乙醇)和9 mL/min的總流速通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)微流控混合制備LNPs。
制備用于透析的HEPES、Tris和PBS（詳見(jiàn)下圖a，Tris即為T(mén)ris Buffer，HBS即為HEPES Buffer），其鹽度為150 mM, pH為7.4。配制后，立即將LNPs轉(zhuǎn)移到10個(gè)kDa MWCO盒中，并在各自的緩沖液中以1000倍的體積透析4小時(shí)和過(guò)夜。透析后，LNPs在Amicon Ultra離心過(guò)濾裝置中以3000g離心濃縮，分子量截止為100 kDa(Millipore Sigma, Burlington, MA)。
使用Zetasizer Nano ZSP對(duì)LNPs進(jìn)行了水動(dòng)力尺寸、多分散性指數(shù)和表面zeta電位的表征。對(duì)于Zetasizer分析，LNPs在各自的緩沖液中稀釋?zhuān)玫饺螠y(cè)量結(jié)果。為了量化mRNA的包封效率和濃度，采用了改進(jìn)的Quanti-iT RiboGreen RNA(Invitrogen)方案。

研究成果
1 緩沖液對(duì)LNP的形成和短期穩(wěn)定性的影響可以忽略不計(jì)
通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)的微流體混合程序制備含有FLuc mRNA的LNP。DLin-MC3-DMA、DSPC、膽固醇和DMG-PEG-2000脂質(zhì)按50:10:38.5:1.5摩爾比混合，pH 4檸檬酸緩沖液中的mRNA溶液與乙醇脂質(zhì)混合物的體積比為3:1，總流速為9 mL/min。然后將所得的LNP懸浮液分成三等份，分別與PBS、Tris或HEPES進(jìn)行透析。
透析后，將LNPs濃縮，并通過(guò)動(dòng)態(tài)光散射(DLS)和改進(jìn)的核糖綠測(cè)定法進(jìn)行分析。
DLS分析顯示，三種緩沖液中LNPs顆粒大小幾乎相同，約為70 nm，PDI約為0.05。
位值表明，PBS和Tris配方的表面電荷略為負(fù)(約?3mV)，HEPES配方的表面電荷為中性，三種緩沖液中包封率均為>92%。
LNP的冷凍透射電鏡顯微照片也沒(méi)有顯示任何顯著的形態(tài)變化，這表明緩沖液對(duì)LNP的形成、形態(tài)或短期穩(wěn)定性的影響可以忽略不計(jì)。

3.2 低溫凍存復(fù)溶后，不同緩沖液中LNP關(guān)鍵表征出現(xiàn)差異
在- 20℃下保存三周后，將不同緩沖溶液中的LNPs在室溫下解凍30分鐘，立即用于研究。
①粒徑
儲(chǔ)存在HEPES和PBS中的樣品在FT后的平均粒徑增大了約50%，而儲(chǔ)存在Tris中的LNPs的粒徑減小了約10 nm。
②PDI
HEPES和Tris中LNPs的PDI在凍融前后基本保持一致，而PBS中LNPs在解凍后PDI增加了3倍（上圖b）。FT后Zeta電位也略有下降（上圖d）。
③LNP形態(tài)
LNP形態(tài)受到凍融的嚴(yán)重影響，冷凍透射電鏡證實(shí)PBS緩沖液中的 LNP在大小上最多樣化，并且顯示出高度異質(zhì)性的內(nèi)部組織，以及顆粒聚集。這可能是脂質(zhì)相和水相分離所導(dǎo)致。具體而言，PBS中的LNP包含典型的100 nm以下的致密LNPs，100~150nm的空脂質(zhì)體樣結(jié)構(gòu)，以及不同粒徑包載水相的LNPs，其中部分水相中含有mRNA。
DLS分析顯示，Tris中的LNPs盡管觀察到形態(tài)變化，但尺寸和PDI沒(méi)有明顯變化，這表明相比于PBS，Tris可能可以更大程度地抑制LNPs顆粒的聚集。
與新鮮LNPs相比，HEPES中的LNPs在凍融后出現(xiàn)du特的沙漏狀結(jié)構(gòu)，尺寸略大(見(jiàn)下圖e)。在LNPs周?chē)纬傻乃菟坪跞狈RNA，這可能表明HEPES可以影響mRNA周?chē)|(zhì)的堆積，例如，HEPES可以促進(jìn)脂質(zhì)與mRNA之間更強(qiáng)的靜電相互作用——HEPES LNPs的zeta電位是真正的中性的，而PBS和Tris LNPs具有?2至?5 mV的輕微負(fù)電荷，這可能表明當(dāng)HEPES存在時(shí)，mRNA電荷的中和作用更有效。

此外，基于冷凍顯微圖像研究了脂質(zhì)膜厚度的變化。
平均而言，脂膜厚度在FT后增加了15%，表明膜水合作用增加。
更具體地說(shuō)，冷凍后，Tris LNPs的脂膜厚度增加了約0.8 nm, PBS增加了約0.6 nm, HEPES LNPs增加了約0.2 nm。尚不wan全清楚這些改變是否表明脂質(zhì)膜成分發(fā)生變化或僅僅是水摻入的結(jié)果，但這些結(jié)果突出了解凍后LNPs的脂質(zhì)膜發(fā)生了顯著變化，且不同緩沖體系中變化程度不同。
以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，不同緩沖液對(duì)mRNA-LNPs的關(guān)鍵表征（形態(tài)、粒徑、PDI，脂質(zhì)膜厚度等）可以產(chǎn)生較大影響。
3.3 轉(zhuǎn)染能力與內(nèi)涵體逃逸的體外評(píng)估
①緩沖液影響LNP轉(zhuǎn)染能力
該研究評(píng)估了不同緩沖液中的LNPs的轉(zhuǎn)染能力和內(nèi)涵體逃逸的程度。分別用包封FLuc mRNA的LNPs處理hela和HEK293T/17(后者用Gal9-GFP報(bào)告系統(tǒng)修飾)兩個(gè)細(xì)胞系，并在24小時(shí)后檢測(cè)。無(wú)論使用何種緩沖液，細(xì)胞存活率均保持在80%(下圖a,c)。轉(zhuǎn)染評(píng)價(jià)表明，緩沖液的轉(zhuǎn)染效率隨細(xì)胞系的不同而變化。在HeLa細(xì)胞中，LNPs轉(zhuǎn)染趨勢(shì)為HEPES＞PBS>Tris(下圖b)，而HEK293T/17細(xì)胞表現(xiàn)出Tris>HEPES>PBS的偏好(下圖d)。
一般來(lái)說(shuō)，所有的mRNA-LNP制劑在解凍后轉(zhuǎn)染效果都有所下降。在HeLa細(xì)胞中，PBS LNPs的轉(zhuǎn)染效率下降最為嚴(yán)重，在所有處理中平均下降4倍，而HEPES在所有處理中平均下降2倍(下圖b)。對(duì)于HEK293T/17細(xì)胞系, HEPES和PBS LNPs均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的下降，而Tris在100和200 ng時(shí)的LNPs分別下降了2 ~ 2.5倍(下圖d)。

②緩沖液影響內(nèi)涵體逃逸效率
凝集素是一個(gè)與病原體入侵和免疫感知相關(guān)的糖結(jié)合凝集素家族。半乳糖凝集素如gal3、gal8和gal9從彌漫的細(xì)胞質(zhì)表達(dá)重新分布到暴露的糖苷位點(diǎn)，這是由于內(nèi)體內(nèi)小葉暴露事件造成的，表明內(nèi)涵體破壞。Gal9已被證明在報(bào)告細(xì)胞內(nèi)涵體逃逸的檢測(cè)中具有最高的信噪比。因此，可利用Galectin 9 (Gal9)- gfp 修飾的HEK293T/17細(xì)胞系，評(píng)估FLuc mRNA LNPs的內(nèi)涵體逃逸情況。
低劑量處理(50 ng)在所有新鮮LNPs中幾乎沒(méi)有變化，HEPES LNPs在FT后表現(xiàn)出最高的Gal9募集和zui顯著的變化(2.6倍)。
高劑量(200ng)處理組中，冷凍前Tris LNPs誘導(dǎo)了最高的Gal9募集。不同緩沖體系中的LNP對(duì)FT的反應(yīng)wan全不同。PBS LNP減少了Gal9的招募，Tris LNPs幾乎沒(méi)有變化，HEPES LNPs增加了Gal9的招募。解凍后的HEPES LNPs內(nèi)涵體逃逸的增加可能是低溫透射電鏡觀察到的形態(tài)學(xué)變化的結(jié)果。LNP形態(tài)的變化導(dǎo)致體外轉(zhuǎn)染的增加，因此HEPES可能促進(jìn)了解凍后LNP形態(tài)的有利變化。

這些體外實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)一步支持了LNP緩沖液組成對(duì)凍融后轉(zhuǎn)染效率的重要性，并揭示了細(xì)胞攝取的差異受到這些變化的影響。
3.4 體內(nèi)成像評(píng)估m(xù)RNA表達(dá)情況
通過(guò)活體成像，探索了不同緩沖體系mRNA-LNP在體內(nèi)的表達(dá)情況。將HEPES、Tris和PBS LNPs靜脈注射到年齡匹配的雌性BALB/c小鼠中，比較熒光素酶的表達(dá)水平和器官特異性。在注射后4和24 h時(shí)間點(diǎn)測(cè)量新鮮和解凍的LNPs的生物發(fā)光信號(hào)。
在所有案例中，生物發(fā)光圖像顯示強(qiáng)烈的肝臟轉(zhuǎn)染模式，與通常的LNP靜脈注射制劑一致。

總體而言，HEK293T/17細(xì)胞系的體內(nèi)轉(zhuǎn)染趨勢(shì)與體外觀察到的相似(Tris > HEPES > PBS)。新鮮LNPs之間的交叉比較得出結(jié)論，與其他緩沖液相比，Tris組在給藥后4小時(shí)增加了2倍。這種功效的增強(qiáng)可能是由于脂質(zhì)膜上的水置換改善了apoe介導(dǎo)的攝取，正如脂質(zhì)膜厚度減少所表明的那樣。
然而，緩沖液導(dǎo)致了不同程度的轉(zhuǎn)染損失。對(duì)于給藥后4小時(shí)的FT組，HEPES顯示總通量減少約2倍，Tris顯示減少約3倍，PBS (LNP配方中最常見(jiàn)的緩沖液)導(dǎo)致總通量減少近9倍。
有趣的是，在24小時(shí)時(shí)間點(diǎn)，不同緩沖液樣品之間mRNA表達(dá)水平?jīng)]有統(tǒng)計(jì)學(xué)上的顯著差異。這可能是LNPs在血液中不斷循環(huán)，緩沖液作用減弱的結(jié)果。
總的來(lái)說(shuō)，與先前的觀察結(jié)果一致，mRNA的傳遞受到凍融過(guò)程的影響。緩沖液對(duì)體內(nèi)給藥效果的巨大影響表明，在LNP制備中選擇適宜的生物緩沖液，或可為保持mRNA-LNP的理化性質(zhì)及生物學(xué)活性提供顯著優(yōu)勢(shì)。
艾偉拓長(zhǎng)期穩(wěn)定供應(yīng)國(guó)產(chǎn)化注射級(jí)海藻糖、蔗糖、TRIS-HCl、HEPES等生物保護(hù)劑與緩沖鹽，均為GMP條件生產(chǎn)，低內(nèi)**，高純度低雜質(zhì)，DNase& RNase free，符合USP，ChP，EP等國(guó)際主流藥典標(biāo)準(zhǔn)，助力重組蛋白疫苗、mRNA疫苗、腺病毒載體疫苗、脂質(zhì)體、單雙抗、抗體偶聯(lián)藥物、CAR-T等生物制劑的研發(fā)生產(chǎn)與中外申報(bào)！歡迎來(lái)詢。

上一篇：配置緩沖液的方法與技巧

下一篇：選購(gòu)藥用蔗糖，你必須知道的那些事兒

返回列表>>

一区二区无码在线观看,成人高清免费日韩黄片,欧美中文一区二区三区,国产成人精品久久久久久久久粉嫩

論文研究（二）| 緩沖體系可能對(duì)LNP的性質(zhì)與穩(wěn)定性有較大影響